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一、实验室常用核酸的浓度与纯度检测

核酸浓度与纯度检测最简单常用的仪器是微量紫外分光光度计，代表为NanoDrop。NanoDrop分光光度计利用分【fèn】子的紫外吸收特性来测定样品浓度。核酸吸收峰为260nm，蛋白样品吸收峰为280nm。此外，很多提取过程中残留的污染物通常在280nm和230nm处有吸收峰。[ NanoDrop Spectrophotometer Resources | Thermo Fisher Scientific - CN]样品浓度【dù】与吸光度成正比关系（Beer-Lambert Law），因此通过测定吸收峰就可以得出核酸【suān】样品的浓度。

核酸样品的纯度可以由A260/A280、A260/A230两个比值来反应。纯度较高DNA的A260/A280应在1.8左右，RNA在2.0左右。若DNA样品的A260/A280数值偏向2.0，则表明存在RNA污染，如有需要应使用RNA酶处理方式样品并纯化，反之亦然。A260/A230数值【zhí】可以反应样品中有机物污染水平，一般大于【yú】2.0则较好，若偏低则表示产物中含胍或乙醇等有机【jī】物的污染（如表1所示）。

比值	测定样品	“纯”样品的比值范围	比值异常的原因
A260/A280	核酸	DNA: ~1.8 RNA: ~2.0	造成低比值的污染物： -蛋白质 -核酸提取步骤中的残余苯酚和其他试剂
A260/A230	核酸	DNA/RNA: ~2.7-15.2	造成低比值的污染物： -蛋白质 -碳水化合物 -提取中的残余苯酚【fēn】 -残余胍（常见于提取柱类方法） -用作辅【fǔ】助沉淀剂的糖原造成高比值的原因： -空白对照有误
A260/A280	蛋白	~0.6	造成高比值的污染物： -核酸

表一紫外吸收法反应纯度的关键比值²

DNA的浓度检测经常会作用后续实验的操作，浓度过高和过低都会【huì】作用PCR、酶切酶连等反【fǎn】应的进行。因此要进行适当稀释，保证反应体系中DNA终浓度在合适的范围内。

另外一种常用的【de】核酸检测方法为荧光光度法（代表常用仪器为Qubit），利用核酸与靶标选择性染料结合后发光的原理来检测浓度，可以检测浓度非常低的样品，灵敏度比紫外分光【guāng】光计高。该方法检测不同性质和结构的核酸时需要特定的试剂盒，因此成本较高。

二、实验室核酸样品质量检测

核酸电泳是常用【yòng】于检测DNA与RNA完整【zhěng】性的方法。将核酸样品加入琼脂糖凝胶上的加样槽后，通过电泳作用，不同大小的核酸分子会以不同速率向正极迁移。长链【liàn】、环形的核酸迁移速度比短链、线型的核酸分子慢。通过荧光染料溴乙锭或商品化染料SybrGreen、GelRed等【děng】染料染色，电泳结束后即可在紫外下监视核酸分子的迁移状况。与核酸大小标准物对比即可判断核酸样品是否存在断裂或污染的状况。

NanoDrop Spectrophotometer Resources | Thermo Fisher Scientific - CN

核酸检测过程中可以用到的耐思耗材：

枪头（100μL、200μL、1000μL等）；微量离心管（1.5mL、2mL）；PCR管类。